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堿基編輯器研究進(jìn)展

2022-07-23 16:20:01來(lái)源:上海希言科學(xué)儀器有限公司 閱讀量:594

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導(dǎo)讀:

在廣泛使用的CRISPR/Cas9基因編輯工具中,核酸酶Cas9含有兩個(gè)具有切割活性的結(jié)構(gòu)域:HNH結(jié)構(gòu)域和RuvC結(jié)構(gòu)域,其中HNH結(jié)構(gòu)域切割與crRNA互補(bǔ)的DNA鏈,而RuvC結(jié)構(gòu)域切割非互補(bǔ)鏈。RuvC結(jié)構(gòu)域可分為三個(gè)亞結(jié)構(gòu)域:RuvC I、RuvC II和RuvC III,RuvC I接近于Cas9的氨基端,RuvC II和RuvC III位于HNH結(jié)構(gòu)域的兩側(cè)。僅對(duì)Cas9中的RuvC I進(jìn)行突變,具體而言就是讓RuvC I的兩個(gè)關(guān)鍵氨基酸殘基中的一個(gè)轉(zhuǎn)換成*(D10A或H840A),從而得到Cas9切口酶(Cas9 nickase, Cas9n)。這種切口酶不能切割非互補(bǔ)DNA鏈,僅能切割與crRNA互補(bǔ)的DNA鏈。如果同時(shí)讓Cas9中的這兩個(gè)結(jié)構(gòu)域發(fā)生突變,便可得到僅對(duì)DNA有結(jié)合活性但沒(méi)有切割活性的dCas9(nuclease-dead Cas9,沒(méi)有核酸酶切割活性的Cas9)。

CRISPR/Cas9是由一種原始的細(xì)菌免疫系統(tǒng)改編而成的,它的作用方式是首先在基因組的一個(gè)靶位點(diǎn)上切割雙鏈DNA。相比之下,堿基編輯并不切割DNA雙螺旋,而是在組成DNA或RNA的四個(gè)堿基中,利用酶地重新排列其中的一個(gè)堿基上的一些原子,從而將這個(gè)堿基轉(zhuǎn)化為一個(gè)不同的堿基,同時(shí)不改變其周圍的堿基。這種能力大大增加了改變遺傳物質(zhì)的選擇手段。2017年,通過(guò)堿基編輯器編輯技單個(gè)堿基技術(shù)入選2017年《科學(xué)》雜志“科學(xué)突破”。

1.Nat Med:堿基編輯器取得重大進(jìn)展!有望在產(chǎn)前治療先天性疾病
doi:10.1038/s41591-018-0184-6; doi:10.1038/s41591-018-0215-3


來(lái)自美國(guó)費(fèi)城兒童醫(yī)院和賓夕法尼亞大學(xué)佩雷爾曼醫(yī)學(xué)院的研究人員進(jìn)行產(chǎn)前基因編輯來(lái)阻止實(shí)驗(yàn)室動(dòng)物出現(xiàn)致命性的代謝障礙,從而有潛力在出生前治療人類先天性疾病。這就為在產(chǎn)前利用一種復(fù)雜的低毒的工具地對(duì)致病性基因中的DNA堿基進(jìn)行編輯提供了概念驗(yàn)證。相關(guān)研究結(jié)果發(fā)表在2018年10月的Nature Medicine期刊上,論文標(biāo)題為“In utero CRISPR-mediated therapeutic editing of metabolic genes”。論文通信作者為賓夕法尼亞大學(xué)佩雷爾曼醫(yī)學(xué)院的Kiran Musunuru博士 和William H. Peranteau博士。
 

圖片來(lái)自Nature Medicine, doi:10.1038/s41591-018-0184-6。

 

這些研究人員使用了基因編輯工具CRISPR-Cas9和第三代堿基編輯器(base editor 3, BE3)靶向編輯一種調(diào)節(jié)*水平的基因,從而降低了在子宮內(nèi)接受過(guò)這種治療的健康小鼠中的*水平。他們還在一小部分事先經(jīng)過(guò)基因改造而攜帶著導(dǎo)致一種致命性肝臟疾病---1型遺傳性*血癥(hereditary tyrosinemia type 1, HT1)---的突變的小鼠中使用產(chǎn)前基因編輯來(lái)改善它們的肝臟功能和阻止新生小鼠死亡。

2.Nat Med:在體內(nèi)利用新型堿基編輯器有望治療遺傳疾病
doi:10.1038/s41591-018-0209-1; doi:10.1038/s41591-018-0215-3


苯丙酮尿癥(phenylketonuria)的病因是編碼苯*羥化酶(phenylalanine hydroxylase, Pah)的基因發(fā)生突變。這種由肝細(xì)胞產(chǎn)生的酶代謝苯*。這種代謝障礙是一種“常染色體隱性”遺傳疾?。簝和绻麖哪赣H那里遺傳一個(gè)突變基因拷貝和從父親那里遺傳一個(gè)突變基因拷貝,那么就會(huì)患上這種疾病。到目前為止,這種疾病仍然是無(wú)法*的。

在一項(xiàng)研究中,來(lái)自瑞士蘇黎世聯(lián)邦理工學(xué)院和蘇黎世大學(xué)的研究人員利用一種方法糾正肝細(xì)胞中的兩個(gè)突變基因拷貝,從而*這種疾病。他們?cè)谛∈篌w內(nèi)取得了成功,。相關(guān)研究結(jié)果發(fā)表在2018年10月的Nature Medicine期刊上,論文標(biāo)題為“Treatment of a metabolic liver disease by in vivo genome base editing in adult mice”。論文通信作者為蘇黎世聯(lián)邦理工學(xué)院的Gerald Schwank教授。

這種由胞苷脫氨酶(cytidine deaminase)加以強(qiáng)化的CRISPR/Cas9系統(tǒng)結(jié)合到這兩個(gè)需要被校正的基因拷貝上,并且在局部打開(kāi)DNA雙鏈。胞苷脫氨酶將致病性的DNA堿基對(duì)C-G轉(zhuǎn)化為健康人體內(nèi)對(duì)應(yīng)基因組位點(diǎn)上存在的堿基對(duì)T-A。這能夠校正Pah酶編碼基因中的DNA堿基錯(cuò)誤。通過(guò)這種方法,這些研究人員改變了成年小鼠中這兩個(gè)突變基因拷貝中的堿基序列。這些經(jīng)過(guò)校正的肝細(xì)胞能夠產(chǎn)生功能性的Pah酶,這些小鼠所患的這種疾病被*了。 

3.Cell子刊:我國(guó)科學(xué)家成功利用堿基編輯修復(fù)人胚胎中的致病性基因突變
doi:10.1016/j.ymthe.2018.08.007


來(lái)自中國(guó)廣州醫(yī)科大學(xué)附屬第三醫(yī)院、中科院生物化學(xué)與細(xì)胞生物學(xué)研究所和上??萍即髮W(xué)的研究人員利用一種改進(jìn)形式的CRISPR基因編輯技術(shù)來(lái)修復(fù)活的人胚胎中的遺傳缺陷。在近期發(fā)表Molecular Therapy期刊上的標(biāo)題為“Correction of the Marfan Syndrome Pathogenic FBN1 Mutation by Base Editing in Human Cells and Heterozygous Embryos”的論文中,描述了他們的研究工作和取得的進(jìn)展。論文通信作者為廣州醫(yī)科大學(xué)附屬第三醫(yī)院生殖醫(yī)學(xué)中心的劉見(jiàn)橋(Jianqiao Liu)教授和中科院生物化學(xué)與細(xì)胞生物學(xué)研究所的黃行許(Xingxu Huang)教授。

圖片來(lái)自Molecular Therapy, doi:10.1016/j.ymthe.2018.08.007。

 

在三年前,一個(gè)中國(guó)研究團(tuán)隊(duì)利用CRISPR對(duì)人胚胎進(jìn)行編輯。該團(tuán)隊(duì)試圖利用這項(xiàng)技術(shù)修復(fù)人胚胎中的遺傳缺陷。雖然這在當(dāng)時(shí)成為世界各地的頭條新聞,但是它的成功率很低---在經(jīng)過(guò)這種技術(shù)編輯后存活下來(lái)的54個(gè)胚胎中,僅4個(gè)胚胎攜帶著成功得到修復(fù)的基 因。從那時(shí)起,人們就開(kāi)發(fā)出一種新的被稱作堿基編輯的CRISPR變體,它以更有效的方式發(fā)揮作用。這種新方法不會(huì)切斷DNA鏈和利用攜帶著所需特征的DNA片段替換移除的DNA片段,而是僅僅改變DNA堿基---比如利用堿基G替換堿基A。在這項(xiàng)新的研究中,這些研究人員使 用這種新方法來(lái)校正導(dǎo)致人類患有馬凡綜合癥(Marfan syndrome)的基因突變,在這種疾病中,患者在FBN1基因上發(fā)生G→A突變。這是一種導(dǎo)致結(jié)締組織問(wèn)題的疾病,而且給那些出生時(shí)就攜帶這種突變的人帶來(lái)無(wú)數(shù)的問(wèn)題。

他們對(duì)18個(gè)胚胎進(jìn)行了基因編輯,并且在所有的這些胚胎中,事先設(shè)計(jì)好的堿基變換按照計(jì)劃發(fā)生。但是,在兩個(gè)胚胎中,其他的堿基也在無(wú)意中發(fā)生變換。他們聲稱他們的研究為這種堿基編輯技術(shù)提供概念驗(yàn)證---在現(xiàn)實(shí)世界的體外受精診所中,有缺 陷的胚胎經(jīng)發(fā)現(xiàn)后會(huì)被丟棄。然而,他們確實(shí)承認(rèn)這個(gè)領(lǐng)域仍然是非常新的,而且在嘗試將這種技術(shù)用于允許發(fā)育成胎兒的胚胎中之前,還需開(kāi)展更多的研究工作。

4.兩篇Protein & Cell報(bào)道我國(guó)科學(xué)家進(jìn)一步優(yōu)化腺嘌呤堿基編輯系統(tǒng)
doi:10.1007/s13238-018-0568-x; doi:10.1007/s13238-018-0566-z


來(lái)自中國(guó)華東師范大學(xué)和中山大學(xué)的兩個(gè)研究小組在小鼠和大鼠品系中開(kāi)發(fā)出一種被稱作腺嘌呤堿基編輯器(adenine base editor, ABE)的堿基編輯系統(tǒng),并對(duì)這種系統(tǒng)加以改進(jìn),這將對(duì)人類遺傳疾病和基因療法帶來(lái)重大的影響。相關(guān)研究結(jié)果發(fā) 表在開(kāi)放存取的Protein & Cell期刊上,論文標(biāo)題分別為“Increasing targeting scope of adenosine base editors in mouse and rat embryos through fusion of TadA deaminase with Cas9 variants”和“Effective and precise adenine base editing in mouse zygotes”。

人基因由堿基A、T、C和G組成,這些堿基以特定的順序排列在一起來(lái)編碼遺傳信息。這種ABE系統(tǒng)能夠產(chǎn)生所需的A→G轉(zhuǎn)化,因而允許科學(xué)家們改變遺傳密碼,同時(shí)讓不想要的結(jié)果zui小化。鑒于幾乎一半的人類遺傳疾病是由C/G→T/C突變引起的,這是通過(guò)ABE系統(tǒng)加 以校正,因此它是一種有前景的治療應(yīng)用技術(shù)。

在這兩項(xiàng)新的研究中,這些研究人員利用這種ABE系統(tǒng)地培育出三種小鼠品系來(lái)模擬一種被稱作杜氏肌營(yíng)養(yǎng)不良(Dunchenne Muscular Dystrophy, DMD)的遺傳性肌肉變性疾病。他們還使用一種大鼠模型來(lái)模擬II型遺傳性糖原貯積病。這些模型可能是測(cè)試創(chuàng)新療法 (特別是基因療法)的重要資源。

5.重磅!Nature和Science同日打擂臺(tái)發(fā)表新型DNA/RNA堿基編輯器,可校正點(diǎn)突變
doi:10.1126/science.aaq0180; doi:10.1038/nature24644


自從5年前CRISPR熱潮開(kāi)始以來(lái),科學(xué)家們就競(jìng)相開(kāi)發(fā)這種強(qiáng)大工具的更加全面或的版本,從而能夠*地簡(jiǎn)化DNA編輯。本周發(fā)表在Science期刊和Nature期刊上的兩項(xiàng)研究進(jìn)一步擴(kuò)大了CRISPR的使用范圍,開(kāi)發(fā)出一種更加微妙的被稱作堿基編輯(base editing)的方法來(lái)修復(fù)遺傳物質(zhì):一項(xiàng)研究擴(kuò)展了一種編輯DNA的策略,而另一項(xiàng)研究通過(guò)對(duì)RNA進(jìn)行堿基編輯而開(kāi)辟了新的領(lǐng)域。 

大量借用CRISPR工具包的堿基編輯系統(tǒng)很容易在非分裂細(xì)胞(nondividing cells)中實(shí)現(xiàn)堿基編輯。DNA具有4個(gè)核苷酸堿基:A、C、T和G,堿基編輯會(huì)將一個(gè)堿基改變?yōu)榱硪粋€(gè)堿基。在Liu的2016年那項(xiàng)研究中,他的團(tuán)隊(duì)將gRNA與一個(gè)“死的”Cas9(dCas9)融合在一起,dCas9不能夠切割整個(gè)DNA雙螺旋,但是仍然能夠在正確的位點(diǎn)上讓它解鏈。這些研究人員將酶APOBEC1附著到gRNA-dCas9上,這會(huì)觸發(fā)一系列化學(xué)反應(yīng),終導(dǎo)致堿基C改變?yōu)閴A基T。DNA的堿基配對(duì)規(guī)則控制著隨后的堿基變化。這種配對(duì)規(guī)則規(guī)定一條DNA鏈上的T與另一條DNA鏈上的A配對(duì)。dCas9經(jīng)進(jìn)一步修飾后在未編輯的DNA鏈上產(chǎn)生切口,從而激活細(xì)胞的DNA修復(fù)機(jī)制,將初始與堿基C配對(duì)的堿基G轉(zhuǎn)化為與這個(gè)新產(chǎn)生的T配對(duì)的A。

圖片來(lái)自 C. BICKEL/SCIENCE; (DATA) D. B. T. COX ET AL., SCIENCE 358, 6362, 2017;J. DOUDNA AND E. CHARPENTIER, SCIENCE 346, 6213, 2014; GAUDELLI ET AL., NATURE 551, 7677, 2017。

 

這個(gè)DNA堿基編輯器并不能夠解決與人類疾病相關(guān)的為常見(jiàn)的點(diǎn)突變(大約占一半):在應(yīng)當(dāng)為G•C的地方存在著A•T。如今,來(lái)自Liu團(tuán)隊(duì)的這個(gè)新的編輯器能夠修復(fù)這種點(diǎn)突變。該團(tuán)隊(duì)再次將gRNA與dCas9融合在一起,但是已知沒(méi)有一種能夠?qū)轉(zhuǎn)化為G的酶。因此,他們利用來(lái)自大腸桿菌的酶TadA開(kāi)出一種新型酶。這種新型酶將A轉(zhuǎn)化為一種被稱作*(inosine, I)的堿基。隨后不論是一種細(xì)胞修復(fù)機(jī)制,還是DNA自我復(fù)制過(guò)程,都會(huì)將I變成G。美國(guó)哈佛大學(xué)CRISPR研究員George Church說(shuō),“在這項(xiàng)研究中,重要的事情是對(duì)TadA酶進(jìn)行基因改造讓它具備某種非天然的功能。”

張鋒團(tuán)隊(duì)通過(guò)將gRNA與一種不同的沒(méi)有切割活性的核酸酶dCas13和一種將RNA中的A轉(zhuǎn)化為I的天然性酶融合在一起而構(gòu)建出一種RNA堿基編輯器。與DNA中不同的是,這不會(huì)導(dǎo)致隨后的堿基變化。含I的RNA僅像那個(gè)位點(diǎn)上存在一個(gè)G那樣發(fā)揮作用。

6.Nat Biotechnol:在人全基因組水平上證實(shí)基于CRISPR的單堿基校正是準(zhǔn)確的
doi:10.1038/nbt.3852


來(lái)自韓國(guó)基礎(chǔ)科學(xué)研究所(Institute for Basic Science, IBS)基因組工程中心的研究人員證實(shí)了一種近期開(kāi)發(fā)的基因編輯方法的準(zhǔn)確性。這種基因編輯工具起著“DNA剪刀”的作用,旨在鑒定和替換人基因組(大小為30億個(gè)堿基對(duì))中的僅一個(gè)核苷酸(或者說(shuō)堿基)。這是在全基因組水平上驗(yàn)證了這種“堿基編輯器(base editor)”的準(zhǔn)確性。這種驗(yàn)證將有助擴(kuò)大這種方法在農(nóng)業(yè)、牲畜和基因療法中的應(yīng)用。相關(guān)研究結(jié)果于2017年4月10日在線發(fā)表在Nature Biotechnology期刊上,論文標(biāo)題為“Genome-wide target specificities of CRISPR RNA-guided programmable deaminases”。論文通信作者為來(lái)自IBS基因組工程中心的Seuk-Min Ryu和Jin-Soo Kim。

為了鑒定這種方法的可靠性,Kim團(tuán)隊(duì)對(duì)一種被稱作Digenome-seq的錯(cuò)誤校驗(yàn)技術(shù)進(jìn)行改進(jìn),以便讓它適用于這種堿基編輯器方法。去年,當(dāng)該團(tuán)隊(duì)分析了CRISPR-Cpf1和CRISPR-Cas9的準(zhǔn)確性時(shí),他們就使用和驗(yàn)證了Digenome-seq。他們也改進(jìn)了計(jì)算機(jī)程序Digenome 2.0以便更加全面地鑒定脫靶位點(diǎn),并且通過(guò)比較不同的gRNA發(fā)現(xiàn)降低脫靶編輯和增加特異性的gRNA。 

7.Nat Biotechnol:利用CRISPR培育出單核苷酸編輯轉(zhuǎn)基因小鼠
doi:10.1038/nbt.3816


人類DNA由大約30億個(gè)核苷酸組成。在某些情形下,僅一個(gè)核苷酸發(fā)生變化就能夠?qū)е聡?yán)重的疾病。科學(xué)家們希望利用一個(gè)正確的核苷酸替換這個(gè)不正確的核苷酸,從而*這些疾病。然而,利用當(dāng)前的基因編輯工具CRISPR-Cas9替換單個(gè)核苷酸存在技術(shù)上的挑戰(zhàn)。如今,在一項(xiàng)新的研究中,來(lái)自韓國(guó)基礎(chǔ)科學(xué)研究所(Institute for Basic Science, IBS)基因組工程中心的研究人員利用這種流行的基因編輯技術(shù)CRISPR-Cas9的一種變體版本培育出單核苷酸編輯小鼠。相關(guān)研究結(jié)果于2017年2月27日在線發(fā)表在Nature Biotechnology期刊上,論文標(biāo)題為“Highly efficient RNA-guided base editing in mouse embryos”。

 

作為近年來(lái)出現(xiàn)的一種卓有成效的基因編輯技術(shù),CRISPR-Cas9的作用機(jī)制是在DNA雙鏈中的一個(gè)發(fā)生突變的核苷酸附近進(jìn)行切割,切除一小段DNA序列。相反,IBS研究人員采用Cas9蛋白的一種變體:切口酶Cas9(nickase Cas9, nCas9),同時(shí)讓Cas9與一種被稱作胞苷脫氨酶(cytidine deaminase, CD)的蛋白融合在一起。CRISPR-nCas9-CD能夠?qū)⒁环N核苷酸替換另一種核苷酸,因而也被稱作堿基編輯器(Base Editor)。2016年,美國(guó)哈佛大學(xué)的David Liu團(tuán)隊(duì)和日本神戶大學(xué)的Keiji Nishda團(tuán)隊(duì)已開(kāi)發(fā)出這種類型的脫氨酶,并且在體外培養(yǎng)的細(xì)胞系中進(jìn)行過(guò)測(cè)試。IBS研究人員通過(guò)將這種技術(shù)用于小鼠胚胎中,進(jìn)一步推動(dòng)它的發(fā)展。 

IBS研究人員在小鼠體內(nèi)測(cè)試了CRISPR-nCas9-CD是否能夠校正Dmd基因(編碼抗肌萎縮蛋白)或Tyr基因(編碼*酶)中的單個(gè)核苷酸。他們?cè)谶@兩種基因中都取得成功:由Dmd基因發(fā)生單核苷酸突變的胚胎發(fā)育而成的小鼠在它們的肌肉中不產(chǎn)生抗肌萎縮蛋白(dystrophin),而Tyr基因發(fā)生單核苷酸突變的小鼠表現(xiàn)出白化性狀??辜∥s蛋白確實(shí)與肌肉肌營(yíng)養(yǎng)不良疾病相關(guān)聯(lián),而*酶控制黑色素產(chǎn)生。

8.Science:利用改進(jìn)的CRISPR/Cas9系統(tǒng)和特異性地實(shí)現(xiàn)單堿基突變
doi:10.1126/science.aaf8729


利用一種引入DNA單個(gè)核苷酸變化的脫氨酶,來(lái)自日本神戶大學(xué)的研究人員構(gòu)建出一種改進(jìn)的CRISPR/Cas9工具,從而避免產(chǎn)生有害的雙鏈斷裂,使得利用CRISPR/Cas9技術(shù)引入的附帶突變小化,而且也不需要加入DNA模板。相關(guān)研究結(jié)果于2016年8月4日在線發(fā)表在Science期刊上,論文標(biāo)題為“Targeted nucleotide editing using hybrid prokaryotic and vertebrate adaptive immune systems”。

為了構(gòu)建一種更加準(zhǔn)確的編輯工具,Kondo和他的同事們將一種沒(méi)有核酸酶活性的不能夠切割雙鏈DNA的Cas9版本或一種產(chǎn)生單鏈切口的切口酶Cas9版本與一種來(lái)自七鰓鰻(sea lamprey)免疫系統(tǒng)的激活誘導(dǎo)性胞苷脫氨酶(activation-induced cytidine deaminase, AID)融合在一起。在正常情形下,這種AID酶在免疫球蛋白和抗體基因中產(chǎn)生突變從而讓免疫系統(tǒng)具有多樣性。AID作用在單鏈DNA上,將胞嘧啶(C)替換為*(U),隨后在一輪DNA復(fù)制中,這種*(U)被轉(zhuǎn)化為胸腺嘧啶(T)。

通過(guò)測(cè)試這種新的雜合復(fù)合物是否能夠在出芽酵母---缺乏一種內(nèi)源性的類似AID的系統(tǒng)---中修飾一種選擇性的標(biāo)志物,Kondo團(tuán)隊(duì)發(fā)現(xiàn)當(dāng)在向?qū)NA(gRNA)的引導(dǎo)下,這種蛋白復(fù)合物靶向作用于CAN1基因,而且相對(duì)于非靶向的選擇性標(biāo)志物,CAN1基因發(fā)生突變的頻率增加了1000倍。利用全基因組測(cè)序,研究人員發(fā)現(xiàn)很少的脫靶突變,只比背景突變率略有增加。論文作者、Kondo實(shí)驗(yàn)室博士后研究員Keiji Nishida說(shuō),“[在AID存在下],這種脫靶突變率是可以接受的,相比于自然的背景突變率增加了不到10倍。”(生物谷 )

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